ELECTROFORESIS

Electroforesis.

 La electroforesis es un método de laboratorio en el que se utiliza una corriente eléctrica controlada con la finalidad de separar biomoleculas según su tamaño y carga eléctrica a través de una matriz gelatinosa.

También es una técnica para la separación de moléculas que se basa en la migración de solutos iónicos bajo la influencia de un campo eléctrico; estas partículas migran hacia el cátodo o ánodo, en dependencia de una combinación de su carga, peso molecular y estructura tridimensional, la ventaja de la electroforesis es la separación, visualización y cuantificación del número de proteínas de una solución, pero esta también afecta la estructura de las proteínas por lo tanto, afecta a la función de la misma.

Métodos electroforéticos zonales.

Son los más comunes, dada su alta aplicabilidad en diferentes campos. Son útiles para lograr la separación de mezclas complejas. Se aplican pequeñas cantidades de la disolución de proteínas a un soporte sólido, que se impregna con una solución tampón. Los  soportes son en general polímeros y forman un gel poroso que restringe el movimiento de las moléculas a través del medio durante la electroforesis y disminuyen los flujos  de convección del solvente. 

 Como soporte han sido utilizados papel (celulosa), almidón, poliacrilamida, agarosa y acetato de celulosa, entre otros.  Este método tiene gran poder resolutivo por que se aplica una cantidad pequeña de proteína a una zona estrecha, mientras que la  longitud del trayecto es mucho mayor  que la zona de aplicación. El equipamiento requerido es simple, fuente de poder,  cubeta vertical u horizontal donde se colocan el soporte y dos electrodos.

Electroforesis en gel  de poliacrilamida.

 Los geles de poliacrilamida se forman por  polimerización de la acrilamida por acción de un agente entrecuzador, es químicamente inerte, de propiedades uniformes, capaz de ser preparado de forma rápida y reproducible. Forma, además, geles transparentes con estabilidad mecánica, insolubles en agua, relativamente no iónicos y que permiten buena visualización de las bandas durante un tiempo prolongado. Además tiene la ventaja de que variando la concentración de polímeros, se puede modificar de manera controlada en el tamaño del poro, lamentablemente cada vez se emplea menos en diagnostico debido a su neurotoxocidad.

Electroforesis en geles de agarosa.

 La agarosa es un polisacárido (originalmente obtenido de algas, como el agar-agar, pero de composición homogénea), cuyas disoluciones (típicamente de 0.5 a 2 %) poseen la propiedad de permanecer liquidas por encima de 50 grados C y formar un gel, semisólido al enfriarse. Este gel está constituido por una matriz o trama tridimensional de fibras poliméricas embebida en gran cantidad de medio líquido, que retarda el paso de las moléculas, se usa usualmente para separar moléculas grandes de alrededor 20.000 nucleótidos.

Factores que afectan la electroforesis.

-       Carga neta.

-       Tamaño.

-       Intensidad del campo eléctrico.

-       Temperatura.

-       Medio soporte.

-       Buffer.

Espectrofotometria

Muchas técnicas analíticas que se emplean en laboratorios de química clínica incorporan los principios de instrumentación espectrofotométrica. La espectrofotometría se utilizan los patrones característicos de absorbancia  de radiación electromagnética para identificar los analitos de interés. Cuando se conoce el patrón espectral se usa la longitud de onda luminosa la cual la absorbancia es máxima, cuantificar dicha sustancia en solución.

Características de la luz.

Debido que la espectrofotometría comprende mediciones con detectores de la radiación electromagnética que se trasmite, es fundamental conocer las principales características de la radiación electromagnética, la luz es una forma visible de radiación electromagnética; o sea que se comporta como si tuviera campos eléctricos y magnéticos oscilados en planos perpendiculares entre si.

Características de la longitud de onda.

La luz, como toda radiación electromagnética, está formada de fotones o paquetes de energía (E) que viajan en ondas. El espectro electromagnético se describe en términos de longitud de onda.

La longitud de onda del espectro electromagnético es la distancia entre los máximos de ondas sucesoras. En el sistema internacional se mide en nanómetros (nm), el número de ondas por el segundo se denomina frecuencia. La longitud de onda se relaciona inmensamente con la energía, mientras mayor es la longitud de onda es menor el número de fotones que contiene. En otras palabras la longitud de onda larga es de baja energía, de manera similar la longitud de onda corta posee más energía.

Espectro electromagnético.

Es el rango de todas las radiaciones electromagnéticas posibles. El espectro de un objeto es la distribución característica de la radiación electromagnética de ese objeto.

El espectro electromagnético se extiende desde las bajas frecuencias usadas para la radio moderna (extremo de la onda larga) hasta los rayos gamma (extremo de la onda corta), que cubren longitudes de onda de entre miles de kilómetros y la fracción del tamaño de un átomo. Se piensa que el límite de la longitud de onda corta está en las cercanías de la longitud Planck, mientras que el límite de la longitud de onda larga es el tamaño del universo mismo, aunque en principio el espectro sea infinito y continuo.

Espectro ultravioleta.

La región UV se define como el rango de longitudes de onda de 195 a 380nm. Posee una región de energía muy alta, provoca daños al ojo humano, la región UV es importante para la determinación cualitativa y cuantitativa de compuestos orgánicos. 

Espectro visible.

Se describe como el rango de longitudes de ondas visibles a simple vista. Esta región va de 380 a 700 nm, se obtiene un espectro continuo con un color visible distinto que corresponde a determinada porción de longitud de onda.

El color visible de una solución corresponde a la longitud de onda que trasmite, no que se absorbe, el color que se absorbe es el complementario del color que se trasmite, por tanto, para efectuar mediciones de absorción es necesario utilizar longitud de onda a la cual la solución colorida absorbe luz.
 

Radiación infrarroja.

Se emplea sobre todo en análisis toxicológicos.

 Ley de Beer.

La mayoría de las medidas espectrofotométricas se basan en la ley de Beer, la concentración de una sustancia es directamente proporcional a la cantidad de luz absorbida, e inversamente proporcional al logaritmo de la luz trasmitida y se expresa matemáticamente así.

A = a.b.c. = 2 – log % T donde:

A = absorbancia.

a = absortividad o coeficiente de absorción.

b = longitud de paso de la luz en centímetros.

c = concentración de la sustancia en interés.

%T = porcentaje de transmitancia.

Absorbancia.

Este compuesto es sinónimo de densidad óptica, se define como la cantidad de energía radiante que una sustancia absorbe a determinada longitud de onda.

Transmitancia.

Es la cantidad de energía radiante que trasmite o deja pasar una sustancia a una determinada longitud de onda.

Espectrofotometría:

Es la medición de la intensidad de la energía radiante en estrecho intervalo de longitud de onda del espectro. Para la selección de la longitud de onda se utilizan rejillas de difracción o prisma.

Fotometría

Es el procedimiento por el cual se efectúan mediciones de energía radiante utilizando filtro para aislar parte del espectro.

Pruebas colorimétricas.

Blanco reactivo

.

Casi todos los reactivos poseen una coloración que tendrán una absorbancia que tienen que ver con el color original que este trae, por lo tanto necesitamos eliminarla para no aumentar la absorbancia de la muestra. Así que sirve para eliminar la absorbancia propia del reactivo, esta resta puede realizarse de manera manual o automáticamente con el fotocolorímetro o espectrofotómetro.

Blanco de muestra.

Es un tubo que se monta utilizando agua destilada y se usa para eliminar la absorbancia propia de la muestra en los casos que se esta presente, hemolisis, ictericia o lipemia.

Blanco de aire.

Es realizarle un cero de absorbancia al equipo para eliminar cualquier inferencia.

Estándar.

Es una solución patrón que tiene una concentración conocida de un determinado metabolito y se utiliza para comparar su color con el de la muestra, y lo más importante, para calcular la concentración del metabolito en estudio en la muestra examinada, a través de la siguiente formula en la ley de Beer.

Concentración        = absorbancia de la muestra          

De la muestra            …………………………………..     X  la concen del estándar.

                                     Absorbancia del estándar.

Cromatografia

La cromatografía es uno de los principales métodos para la separación de especies químicas estrechamente relacionadas en mezclas complejas. La cromatografía es un método físico de separación basado en la distribución de los componentes de una mezcla entre dos fases inmiscibles, una fija o estacionaria y otra móvil.

En todas las separaciones cromatográficas la muestra se disuelve en una fase móvil, que puede ser un gas un líquido o un fluido supercrítico. Esta fase móvil se hace pasar a través de una fase estacionaria inmiscible, la cual se mantienen fija en una columna o sobre una superficie sólida. Las fases se eligen de tal forma que los componentes de la muestra se distribuyen de modo distinto entre la fase móvil y la fase estacionaria. Aquellos componentes que son retenidos con más fuerza por la fase estacionaria se mueven lentamente con el flujo; por el contrario los componentes que unen débilmente a la fase estacionaria, se mueven con rapidez. Como consecuencia de la distinta movilidad, los componentes de la muestra se separan en bandas discriminadas que pueden analizarse cualitativa y/o cuantitativamente.

   TOMA DE MUESTRA SANGUÍNEA

 procedimiento que permite acceder al torrente sanguíneo para extraer una pequeña muestra de            sangre, que sera utilizada en diversas pruebas.

                                       COMPOSICIÓN DE LA SANGRE

                                                                                                                                                                   

 se pueden obtener muestras: De sangre venosa y  de sangre arterial   

en la sangre venosa las sustancias a analizar estas solubles y dispersas

                        en este caso la sangre es de color oscuro.

                       en la sangre arterial útil en pO2, pCO2 y PH del plasma y la sangre arterial

                         tiene un color rojo vivo.

                                      propósitos de la toma de muestra 

                         * Medir los componentes de la sangre

                         * Monitorizar la respuesta de un cliente a una terapia

                         * Determinar el grupo sanguíneo del cliente 

                                           PREPARACIÓN DE MATERIALES

Precauciones de bioseguridad La manipulación inapropiada puede convertirse en una fuente de riesgo biológico para las personas que están en contacto o para el medio ambiente. Utilizar los elementos de protección personal necesarios para evitar exposición con riesgo biológico, de acuerdo con la fuente de la muestra.

 • Protección ocular: gafas o mascarilla con visera.

 • Mascarilla, alcohol al 70%,algodón, esparadrapo, jeringa de 5ml 

 • Guantes, torniquete, tubos al vacío con  anticongelante edta (k3), (NA2), u otro anticoagulante 

 • Bata. 

 • Contenedores para especímenes, a prueba de fugas y de fácil sellamiento.

 Cumplir con las recomendaciones de manejo de elementos cortopunzantes:

 • No reenfundar agujas. 

 • Disponer y utilizar adecuadamente el contenedor para cortopunzantes (guardián)

 • No transportar jeringas con agujas. Se recomienda transferir el aspirado a un tubo estéril.

 En caso de accidente con riesgo biológico, avisar inmediatamente según las recomendaciones del  protocolo de accidente de trabajo con riesgo biológico institucional.

                                        Preparación de elementos

Una vez conocida la solicitud del tipo de examen, se debe preparar el equipo necesario para la obtención, la conservación y el transporte correctos de la muestra. Las propiedades biológicas de esta pueden ser alteradas por variables medioambientales como: tiempo, contenedor, contaminación externa. 

                                                                                                                                                                       

       

                                                                                                                                         
 TUBO CON TAPA ROJA 
Tubo para serología, sin anticoagulante, en plástico, transparencia cristal, con el interior 
recubierto de silicona y activador de coágulo, con un volumen aproximado de aspiración de 4.0 
ml, de 13 por 75 mm, con tapa de seguridad HEMOGARD y tapón siliconado hemorrepelente. 

TUBO CON TAPA AZUL 
Tubo para hemostasia full draw, en vidrio con fondo de doble espesor, con buffer 
citrato 0.129 M equivalente a una concentración de citrato de sodio al 3.8 %, con un volumen 
aproximado de aspiración de 4.5 ml, de 13 por 75 mm, con tapa de seguridad HEMOGARD y 
tapón siliconado hemorrepelente, con el interior recubierto con doble capa de silicona. Para pruebas de coagulación. 

TUBO CON TAPA LILA 
Tubo para hematología, en plástico, transparencia cristal, con el interior recubierto de 
silicona, y K2 EDTA pulverizado en las paredes del tubo, con un volumen aproximado de 
aspiración de 2.0 ml, de 13 . 75 mm, con tapa de seguridad HEMOGARD y tapón siliconado 
hemorrepelente. 

TUBO CON TAPA AMARILLA 
Tubo para serología, sin anticoagulante, con gel separador, en vidrio con fondo de 
doble espesor, con el interior recubierto de silicona y activador de coágulo, con un volumen 
aproximado de aspiración de 6.0 ml, de 13 por 100 mm, con tapa de seguridad HEMOGARD y 
tapón siliconado hemorrepelente. 

TUBO CON TAPA NEGRA 
Tubo para ERS, (ERITROSEDIMENTACION) en vidrio con fondo de doble espesor, con buffer citrato 0.129 M 
equivalente a una concentración de citrato de sodio al 3.8 %, con un volumen aproximado de 
aspiración de 2.4 ml, de 13 . 75 mm, con tapa de seguridad HEMOGARD y tapón siliconado 
hemorrepelente. Útil para medir la velocidad de sedimentacion globular. 

TUBO CON TAPA CELESTE 
Tubo con 143 unidades USP de Heparina de Sodio para el estudio de traza de metales. 
El tubo es de vidrio con fondo de doble espesor , con un volumen aproximado de aspiración de 
7.0 ml, de 13 por 100 mm. y posee cantidades mínimas de elementos traza (zinc, magnesio, 
hierro, plomo, calcio, cobre, arsénico, manganeso, cadmio, cromo y antimonio) por lo que no 
interfieren con el análisis. Con tapón Hemogard que está libre de metales.  

 PREPARACIÓN DEL PACIENTE

* Ayuno del paciente
* Sobre el ejercicio muscular
* Preparación psicológica
* posición del paciente      

ATENCIÓN DEL PACIENTE: Todas las muestras deben ir acompañadas de una solicitud debidamente formulada. La solicitud debe contener la siguiente información:
a) La identificación completa del paciente:
  Nombre completo
  Sexo
  Número de cédula o seguro social
  Datos para su localización  Sala y número de cama si está hospitalizado
  Número de teléfono si es ambulatorio
 b) Médico solicitante:
  Nombre completo
  Especialidad
  Registro
 c) Pruebas que se realizarán Es deseable que la solicitud incluya información clínica de utilidad
  Diagnóstico
 Ingestión de drogas
 Restricciones especiales
 d) Fecha de orden y fecha de colección
 e) Hora de extracción

                                             SITIOS DE PUNCIÓN
* cuero cabelludo venas superficiales del cráneo
* cuello: yugular externa
* axila: vena axilar
* fosa antecubital: vena cefálica, basílica y mediana
* antebrazo: vena radial, cubital y mediana
* mano: venas dorsales de la mano
* tobillo: safena externa y interna
* pie: venas dorsales del pie

   

                                                                                                                                                              LA PALPACIÓN: Antes de proceder a puncionar, se debe escoger la vena. La mejor manera es realizando una palpación de las mismas para esa decisión. Para ello coloque el torniquete 3 a 4 pulgadas por arriba del sitio seleccionado, para visualizarlas mejor. Debe tener presente en no mantener el torniquete por más de 3 minutos, para evitar la hemoconcentración. Las venas más utilizadas para la venopunción, están localizadas en el área antecubital. Entre éstas tenemos:

 a) Vena Cubital: Es la más larga y gruesa de todas y es la preferida por bordear la musculatura del brazo.

b) Vena Cefálica: Tiene iguales características de la anterior, pero es un poco menos gruesa.

 c) Vena Basílica: Es más pequeña que las anteriores. Esta vena está cerca de la arteria braquial, por lo que su punción es riesgosa y su área es más sensible y dolorosa para el paciente.

 Al palpar hágalo con la punta de sus dedos, tratando de seguir el rastro de las venas. Aquí también son útiles sus conocimientos en la anatomía de las venas de las extremidades superiores. En ocasiones si no visualiza la vena, puede forzar la sangre dentro de la vena a través de un suave masaje de abajo hacia arriba.  

     

14.- Cnnnnolocar una torunda de algodón secla en un   contenedor.​

17.- Ve

* Se debe limpiar la zona que se va a puncionar con alcohol al 70%
* Colocar el torniquete
* Introducir la aguja dejando el espacio de un angulo de 45° entre el brazo y la jeringa
* Soltar el torniquete una vez que la sangre empiece a fluir
* Introducir la muestra de sangre al tubo correspondiente por sus respectivas paredes y quitando la    aguja de la  jeringa
* Etiquetar los tubos, nombre y fecha de la extracción sanguínea
* Depositar la aguja en donde se debe en un guardián

                                                          PRECAUCIONES
 A la hora de realizar una toma de muestras hay que evitar errores ya que un error de  estos puede ser un error fatal como el de confundir o olvidar poner el nombre del paciente.

* No dejar una muestra sin ser etiquetada
* Etiquetadas con el nombre del paciente equivocado
* Muestras diluidas
* Muestras concentradoras
* Muestras coaguladas e insuficientes
* Aditivo o anticoagulante inadecuado
* Muestras hemolizadas
* Tener el equipo en buenas condiciones ya que, esto disminuye y evita el riesgo en relación a accidentes y complicaciones
* y por ultimo no puncionar en zonas afectadas ya sea donde se encuentren lunares, verrugas,  o sitios del cuerpo golpeados.

MATERIALES Y EQUIPOS DE LABORATORIO

para abordar nuestro tema principal debemos primero hablar sobre el laboratorio. El laboratorio clínico es el lugar donde se realizan análisis clínicos que contribuyen al estudio, prevención, diagnostico y tratamiento de los problemas de salud de los pacientes. 

existen dos tipos de laboratorios, están los de rutina y los laboratorios especializados.

en los laboratorios de rutina existen cuatro áreas básicas:

* hematología

* inmunología

* microbiología

* química clínica

los laboratorios de especialidad están compuestos por equipos sofisticados los cuales ayudan a realizar estudios mas especializados que requieren equipos especializado y personal calificado. Por ejemplo se utilizan en estos casos: 

* estudios genéticos

* cromatografías de alta resolución 

* amplificación de ácidos nucleicos 

* citrometría de flujo 

respecto a la organización del laboratorio, este se puede seccionar en varias áreas especificas sin intervenir en los procesos que se este realizando en otra área.

encontramos la sala de espera y recepción, el área de toma de muestras es donde se toma la muestra a los pacientes para luego distribuirla a las diferentes secciones del laboratorio. 

En el área de hematología se realizan tres tipos de pruebas las cuales podemos resumir de esta manera: 

* pruebas de coagulación

* pruebas de contabilidad sanguínea  

* pruebas de morfología sanguínea

En el área de química clínica podemos dividir los exámenes en tres grupos:

* química sanguínea de rutina

* exámenes generales de orina

* determinación de reserva electrolítica y bióxido de carbono en la sangre

En el área de microbiologia también se puede dividir en tres tipos de exámenes:

* coproparasitología: investiga la presencia de parásitos en la materia fecal

* bacteriología: estudia la presencia o actividad de microorganismos en la sangre, orina, jugos gástricos, materia fecal.

En el área de Inmunología se realizan pruebas sobre anticuerpos que revelan la actividad y presencia de microorganismos en el cuerpo.

Equipos de laboratorio

En el laboratorio se encuentran distintos equipos los cuales son de gran utilidad en el trabajo ya que nos permiten realizar mas rápido y con mayor efectividad los procesos. Entre estos equipos se encuentran:

* Microscopio: El microscopio es utilizado para observar microorganismos que no pueden ser observados a simple vista. es un instrumento fundamental en un laboratorio clinico

* Centrifuga: La centrifuga es un equipo de laboratorio que genera movimientos de rotación, tiene el objetivo de separar los componentes que constituyen una sustancia.  

* Balanza analítica: es un instrumento que sirve para pesar y medir sustancias con un alto grado de exactitud.

* Espectofotometro: Un espectofotometro es un instrumento usado en el análisis químico que sirve para medir, en función de la longitud de onda, la relación entre valores de una misma magnitud fotométrica relativos a dos haces de radiaciones y la concentración o reacciones químicas que se miden en una muestra. es utilizado en los laboratorios de química para la cuantificacion de sustancias y microorganismos.

 

* Esterilizadores: El autoclave es un equipo de laboratorio que se utiliza para esterilizar. por esterilizar se entiende la destrucción o eliminación de toda forma de vida microbiana (incluyendo esporas) presente en objetos inanimados mediante procedimientos físicos, químicos o gaseosos. 

* Autoanalizador automático:

Un autoanalizador automático es una máquina de un laboratorio clínico diseñado para medir diferentes sustancias químicas y otras características en un número de muestras biológicas, con una asistencia humana mínima.

Estas mediciones de sangre y otros líquidos pueden usarse para el diagnóstico de la enfermedad.

* Rotador serologico: El rotador serologico es un equipo medico utilizado en los laboratorios; para la mezcla, la homogeneizacion y/o preparación de combinaciones de sustancias .

 

Por otra parte en el laboratorio están los materiales los cuales son fundamentales en este para los procesos de análisis de sustancias.

Existen diferentes clases de materiales, estos se clasifican en: 

* material de fabricación

* según su función

* material volumetrico

* material no volumetrico

Los elementos de uso común en el laboratorio se clasifican según el material por el cual estén constituidos. entre los mas destacados están: 

* Metal: llamado de sostén (y calentamiento). Cuando se quiere armar un aparato y se deben sostener las diferentes piezas que lo componen, y que generalmente son de vidrio, se utilizan aparatos de hierro, de bronce o de algunas aleaciones metálicas resistentes a los ataques químicos, como ser aleaciones con molibdeno. Estos son algunos ejemplos de instrumentos  hecho en este material 

 

* Vidrio: Es el material —que se utiliza para fabricar elementos de laboratorio debido a su fácil limpieza y su neutralidad frente a los reactivos químicos. También cabe resaltar su resistencia a altas temperaturas, este es uno de los motivos por los cuales es el mas utilizado para los materiales de laboratorio. el vidrio pyrex es el predilecto por su resistencia. ejemplo de estos son: Matraz aforado, Erlenmeyer, Probetas, pipetas

 

* Porcelana:  Este material está constituido por cerámica vitrificada, su resistencia química y mecánica son buenas, es otro de los materiales mas utilizados en los laboratorios de química debido a su neutralidad frente a los reactivos químicos y su gran resistencia a las altas temperaturas, debido a esta última propiedad es que los crisoles son fabricados de porcelana. Ejemplo de esto es: cristalizadores, capsulas de porcelana, embudo de buchner, mortero. 

* Plástico: Las ventajas  decisivas de los plásticos son su resistencia a la rotura y su bajo peso. Sus propiedades físicas y químicas varían notablemente según su composición.

El material también se clasifica en volumetrico y no volumetrico.

los instrumentos volumetricos son aquellos que vienen ya calibrados y solo pueden resistir una temperatura máxima de 20°c, si se pasa de esta temperatura se descalibra y su resultado sera inexacto. entre estos están: Matraz aforado, pipeta, probeta, bureta, pipeta graduada.

El material no volumetrico puede soportar temperaturas muy altas y no corre riesgo de descalibrarse, este es el que se utiliza cuando se necesita elevar una sustancia a una temperatura muy alta. en este grupo están: vasos de precipitados, erlenmeyer, cristalizadores. 

BIOSEGURIDAD EN EL LABORATORIO

la bioseguridad se define como el conjunto de medidas preventivas, destinadas a mantener el control de factores de riesgo

laborales procedentes de agentes biológicos, físicos o químicos, logrando la prevención de impactos nocivos.

En el laboratorio hay que tener ciertas precauciones las cuales se han descrito a nivel universal. se entiende por precauciones universales al conjunto de técnicas y procedimientos destinados a proteger al personal que conforma el equipo de salud de la posible infección con ciertos agentes, principalmente virus de la inmunodeficiencia humana, virus de la hepatitis B, virus de la hepatitis C, entre otros, durante las actividades de atención a pacientes o durante el trabajo con sus fluidos o tejidos corporales. 

'' todos los pacientes y sus fluidos corporales independientemente del diagnostico de ingreso o motivo por el cual haya tenido que ingresar al hospital o clínica, deberán ser considerados como potencialmente infectantes y se debe tomar las precauciones necesarias para prevenir que ocurra transmisión''.

líquidos de precaución universal 

* sangre

* semen 

*secreción vaginal

* leche materna 

* liquido cefalorraquídeo

* liquido sinovial

* liquido pleural 

* liquido amniótico

* liquido peritoneo

* liquido pericardico

* cualquier otro liquido contaminado con sangre

precauciones universales

* lavado de manos ( antes, durante y después de manipular secreciones corporales o cualquier otro fluido  )

* deseche el material corto-punzante en el guardián de seguridad

* uso de guantes ( se debe usar guantes para todo el procedimiento que implique contacto con sangre  y otros fluidos corporales, considerados de precaución universal )

* uso de mascarillas ( con esta medida se previene la exposición de las membranas mucosas de la boca, la nariz y los ojos, a líquidos potencialmente infectados ) 

* gafas de seguridad para protegerse de salpicaduras

* bata de protección, hecha con material de baja permeabilidad, manga larga y puños ajustados.

* no fume, no beba, no coma en el laboratorio

* no guarde alimentos en equipos de refrigeración junto con productos químicos o sustancias contaminados

* restrinja el ingreso a áreas de alto riesgo

* maneje todo paciente como potencialmente infectado

* evite desenfundar y re- enfundar agujas manualmente

* no reutilice material contaminado

* bajo ninguna circunstancia se pipeteara sustancia alguna con la boca, para ello se utilizan pipetas automáticas.  

sistema internacional de colores 

existe un sistema el cual esta basado en la correcta manera de desechar los residuos según su grado de toxicidad o de peligro. los mas usados son los siguientes:

* gris : papel y cartón

* rojo: residuos peligrosos

* azul: plástico

* verde: ordinarios e inertes 

* blanco: vidrios y latas

* crema: biodegradables

existe una cabina de seguridad biológica que forma parte de un grupo de equipos destinado a mejorar las condiciones generales bajo las cuales se realizan una gran variedad de actividades en los laboratorios clínicos. estas actividades abarcan desde procesos rutinarios para la identificación de microorganismos hasta actividades especializadas de investigación. son igualmente conocidas con diversos nombres tales como ¨ gabinetes de bioseguridad¨,  ¨campanas de flujo laminar¨ y ¨purificadores¨. los equipos son los que garantizan la existencia de ambientes controlados, indispensables para realizar actividades que por sus características resultan potencialmente peligrosas para la salud del hombre y el ambiente. por otra parte, algunas de las cabinas protegen el estado de los productos o cultivos objeto de investigación.

en el campo de la salud y otras ramas, existen unos símbolos los cuales determinan cual es el riesgo al  que se puede estar expuesto. algunos de estos son:

en este ámbito existen riesgos físicos, químicos, biológicos y riesgos de accidente.
los riesgos físicos pueden surgir por equipos que generen calor o llama, equipos de baja temperatura, material radioactivo, ruidos o vibraciones, radiación ultravioleta y radiación infrarroja.
los riesgos químicos se producen por contaminantes del aire, sustancias toxicas, sustancias explosivas, sustancias irritantes, sustancias volátiles, sustancias corrosivas.
los riesgos biológicos ocurren cuando estamos expuestos a agentes biológicos como virus, bacterias, hongos los cuales se encuentran presentes en una sustancia que estemos manipulando.
el riesgo de accidente puede ocurrir cuando menos lo esperemos, puede ser ocasionado por el equipo de vidrio, equipo corto-punzante, derrames y salpicaduras.